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可见分光光度法
注意：正式测定之前选择2-3个预期差异大的样本做预测定，
确保蛋白浓度在1～10mg/ml范围内。
测定意义
样品可溶性蛋白质含量常常用于酶活性计算。此外，可溶性蛋白质含量也用于食品等质量分析。
测定原理
强碱性溶液中，双缩脲与 CuSO4形成紫色络合物；紫色络合物颜色的深浅与蛋白质浓度成正比，而与蛋白质分子量及氨基酸成分无关，故可用来测定蛋白质含量。该方法测定范围为1~10mg 蛋白质，适用于蛋白质浓度高的样品，尤其是动物材料。
自备仪器和用品
离心机、可见分光光度计、移液器、1mL玻璃比色皿和蒸馏水。
试剂组成和配制
试剂一：液体×1 瓶，4℃保存。
标准品：液体×1 瓶，5 mg/mL，4℃保存。
样品中可溶性蛋白质提取
1. 液体样品：澄清无色液体样品可以直接测定。
2. 组织样品：按照组织质量（g）：提取液体积(mL)为1：5~10 的比例（建议称取约 0.1g组织，加入1mL提取液（ 自备，根据需要选用酶提取缓冲液或者蒸馏水或者生理盐水）冰浴匀浆，8000g，4℃离心10min，取上清，即待测液。（动物样品常常需要稀释）
3. 细菌、真菌：按照细胞数量（104个）：提取液体积（mL）为500~1000：1的比例（建议500 万细胞加入1mL提取液），冰浴超声波破碎细胞（功率300w，超声3秒，间隔7秒，总时间3min）；然后8000g，4℃，离心10min，取上清置于冰上待测。
测定操作
1. 分光光度计预热30min，调节波长到540nm，蒸馏水调零。
2. 空白管：取1mL玻璃比色皿，加入200μL 蒸馏水，1000μL试剂一，混匀后室温静置15min，于540nm比色，记为A空白管。
3. 标准管：取1mL玻璃比色皿，加入200μL标准液，1000μL试剂一，混匀后室温静置15min，于540nm比色，记为A标准管。
4. 测定管：取1mL玻璃比色皿，加入200μL待测液，1000μL试剂一，混匀后室温静置15min，于540nm比色，记为A测定管。
注意：空白管和标准管只需测定一次。